Полезное:
Как сделать разговор полезным и приятным
Как сделать объемную звезду своими руками
Как сделать то, что делать не хочется?
Как сделать погремушку
Как сделать так чтобы женщины сами знакомились с вами
Как сделать идею коммерческой
Как сделать хорошую растяжку ног?
Как сделать наш разум здоровым?
Как сделать, чтобы люди обманывали меньше
Вопрос 4. Как сделать так, чтобы вас уважали и ценили?
Как сделать лучше себе и другим людям
Как сделать свидание интересным?
Категории:
АрхитектураАстрономияБиологияГеографияГеологияИнформатикаИскусствоИсторияКулинарияКультураМаркетингМатематикаМедицинаМенеджментОхрана трудаПравоПроизводствоПсихологияРелигияСоциологияСпортТехникаФизикаФилософияХимияЭкологияЭкономикаЭлектроника
|
Лабораторная диагностика микаплазмозовМикоплазмы — прокариоты, не имеющие клеточной стенки и ограниченные лишь трехслойной мембраной. Обладают полиморфизмом (кокки, нити, ветвистые структуры), растут на бесклеточных питательных средах. В связи с отсутствием клеточной стенки чувствительны к осмотическому шоку. Для предотвращения осмотического лизиса в состав питательных сред включают стабилизирующие соли и другие вещества. Патогенные микоплазмы для роста на искусственных питательных средах требуют добавления многих компонентов, которые они не способны синтезировать сами. В состав сред обязательно включают сыворотку крови как источник липопротеина. Наряду со стеринами, фосфолипидами, липидами патогенным микоплаз-мам необходим низкомолекулярный белок. В связи с вышеизложенным микоплазмы выращивают на средах с сывороткой крови, экстрактами дрожжей, сердечной мышцы, добавлением мембранных липидов или их предшественников. Температурный оптимум для микоплазм, уреаплазм и ахолеплазм составляет 37-38° С, рН 7,8-8,0, кроме уреаплазм (оптимум рН 6,0). Все микоплазмы выделены в самостоятельный класс Mollicules с одним отрядом — Mycoplasmatales, который подразделяется на три семейства: Mycoplasmataceae, Acholeplasmataceae, Spiroplasmataceae. Семейство Mycoplasmataceae включает два рода: Mycoplasma и Ureaplasma. Семейство Acholeoplasmataceae имеет один род — Acholeoplasma. Семейство Spiroplasmataceae представлено одним родом — Spiroplasma. Схема бактериологического исследования при диагностике Материал берут на ранних стадиях клинического проявления болезни, от трупов животных не позднее 2-3 ч после гибели, с максимальным соблюдением стерильности и транспортируют в термосе со льдом. Изоляция микоплазм наиболее вероятна, если посев на питательные среды произведен в первые пять часов после взятия материала. Для хранения в течение 2-3 суток материал замораживают при -20° С, для более длительного — при -70°С или помещают в жидкий азот. Материал, взятый тампонами, целесообразно помещать в транспортную среду для микоплазм. При транспортировке образцов маститного молока рекомендуется в него добавлять 5 мкг/мл ампициллина. Прямое микроскопическое обнаружение микоплазм в окрашенных препаратах из исследуемого материала из-за полиморфизма, слабого восприятия красителей и хрупкости клеток имеет небольшую диагностическую ценность. Более эффективно обнаружение и идентификация микоплазм при помощи метода флуоресцирующих антител, ИФА, ПЦР. С целью выделения культуры микоплазм обычно материал высевают в две пробирки с жидкой питательной средой и в две чашки Петри с агаровой средой. Экссудат и фетальную жидкость высевают на среды без предварительной обработки. Тканевый материал и внутрисуставная жидкость могут содержать ингибиторы, поэтому их разводят в жидкой питательной среде до 10"6 и каждое разведение инкубируют. Ткани предварительно гомогенизируют. Гомогенизацию проводят в фосфатном буферном растворе или жидкой питательной среде. Чрезмерно измельчать ткани не рекомендуется из-за выделения ингибиторов, приготовление разведений гомогената преследует эту же цель. Наряду с посевом гомогената рекомендуется производить посев блоками тканей, например легочной, непосредственно на агаровую среду. С целью подавления роста обычных бактерий и грибов исследуемый материал (гомогенат) перед посевом обрабатывают. Для этого взвесь тканевого материала разводят фосфатно-солевым раств ором 1:10, фильтруют через стерильный ватно-марлевый фильтр, к фильтрату добавляют пенициллин (5000 ЕД/мл), при значительной контаминации — полимиксин В (100 ЕД/мл), ацетат таллия (1:2000-1:4000), для подавления грибов — амфотерицин В (50 мкг/мл), чаще используют пенициллин и ацетат таллия. Взвесь с антибиотиками выдерживают при комнатной температуре 40 минут и делают контрольный высев на МПА и МПБ. Материал сохраняют при 5-10° С. В случае роста бактерий деконтаминацию проводят повторно. Другим способом освобождения от контаминантов является пропускание материала через мембранные фильтры 3 и 4. Плотные питательные среды лучше разливать в стеклянные чашки Петри, т.к. некоторые виды пластмасс ингибируют рост микоплазм. Посевы на плотных средах инкубируют в течение 5-14 суток в аэробных и анаэробных условиях при 37-38°С, а поскольку культивирование достаточно длительное, во избежание подсыхания сред его проводят при относительной влажности около 75-80%. Наилучшие результаты удается получить при использовании культуральных сосудов с 5-10% СО2. Пробирки с посевами в жидкие питательные среды инкубируют в аэробных условиях и ежедневно контролируют на наличие роста. Для подтверждения роста микоплазм на жидких питательных средах производят высевы на плотную питательную среду. Результат посева на плотные среды признают отрицательным при отсутствии роста в течение 14 суток. На плотных средах наличие колоний обнаруживают под малым уве личением микроскопа (х25 х50). При отсутствии роста проводят до Микоплазмы образуют довольно характерные колонии на плотных питательных средах. Центр колонии темный, периферия прозрачная. Рельеф: центр приподнятый («пуговчатый»), периферическая часть колонии плоская (форма «яичницы-глазуньи»). Центральная часть колонии врастает в толщу питательной среды, что обнаруживают путем снятия бактериальной массы фламбированным скальпелем или бактериологической петлей с последующим изучением участка среды под колонией при помощи микроскопа. При обнаружении колоний, сходных с колониями микоплазм, проводят клонирование на средах без ингибиторов с целью получения чистой культуры. Из бульонной культуры готовят разведения 10-1-1-10, каждое из которых (0,2-0,3 мл) высевают на две чашки Петри с агаровой средой. Для выделения чистой культуры используют два основных методических приема. В первом случае вырезают блок агаровой среды, содержащий одну колонию, переворачивают и засевают на поверхность плотной питательной среды. Посевы инкубируют 48-72 часа. Процедуру повторяют уже с тремя изолированными колониями. Во втором случае агаровый блок помещают в пробирку с 2-3 мл жидкой питательной среды, инкубируют Под воздействием ингибиторов, входящих в состав питательных сред для первичного культивирования микоплазм, возможна L-трансформация бактериальных контаминантов, что требует дифференциации колоний Колонии L-форм бактерий имеют сходную морфологию, но менее прозрачны и имеют выраженную зернистую структуру. Для более точной дифференциации микоплазм от L-форм бактерий производят высев колоний на питательную агаровую или жидкую среду без пенициллина и ацетата таллия. Посевы инкубирют в течение пяти дней, периодически просматривая на наличие колоний на агаре и типичных бактериальных клеток в жидкой среде. Их присутствие свидетельствует о реверсии L-форм в исходное состояние. Кроме того, колонии микоплазм и L-форм бактерий дифференцируют при окраске по методу Динес. Для этого вырезают агаровый блок с изучаемой колонией, наносят несколько капель красителя Динес (метиленовый голубой — 2,4 г, мальтоза — 10 г, азур II — 1,25 г, натрия хлорид — 0,25 г, дистиллированная вода — 100 мл) на несколько минут, промывают блок водой и исследуют. Первоначально все колонии окрашиваются в синий цвет, но через пятнадцать минут колонии бактерий, в отличие от микоплазм, обесцвечиваются за счет редукции метиленового синего. Также учитывают, что колонии обычных бактерий при окраске могут смываться, а микоплазм нет. Для определения морфологических и тинкториальных свойств клеток микоплазм готовят на стеклах отпечатки колоний, бульонную культуру центрифугируют при 10-15 тыс.g, осадок однократно отмывают дистиллированной водой и готовят мазки. Препараты фиксируют метанолом, ацетоном и окрашивают по Граму и краской Романовского-Гимза (1:10) 3-4 часа. По Граму микоплазмы окрашиваются отрицательно, красителем Романовского-Гимза микоплазмы и ахолеплазмы — в светло-фиолетовый, уреаплазмы — в красно-фиолетовый цвет. Культуры микоплазм в процессе работы поддерживают путем пересева на жидких питательных средах с интервалом 2-3 недели и хранят при 4-5° С. Агаровые культуры сохраняют в замороженном состоянии в виде ага ровых блоков при-30--------------------- 40° С. Родовую идентификацию выделенных чистых культур микоплазм (роды Mycoplasma, Ureaplsma, Acholeplasma) осуществляют по чувствительности к дигитонину и уреазной активности с учетом диаметра микроколоний по схеме, представленной ниже. Видовую идентификацию микоплазм осуществляют путем дальнейшего изучения дополнительных характеристик, ферментативной активности. На различных этапах бактериологического исследования применяют серологические методы идентификации микоплазм. При диагностике некоторых микоплазмозов практикуется проведение биологической пробы и серологическая диагностика. Основные методы исследований, используемые при идентификации микоплазм, изложены ниже.
|